Учебная работа № 56720. Контрольная Токсикологическая химия, вариант 4

Учебная работа № 56720. Контрольная Токсикологическая химия, вариант 4

Количество страниц учебной работы: 17
Содержание:
ВАРИАНТ №4
1. Метод изолирования лекарственных веществ подкисленной водой по В.А.Крамаренко.
2. ХТА на производные фенотиазина.
3. Иммуноферментный анализ: сущность, классификация, особенности, достоинства и недостатки. Использование в анализе на наркотики.
4. Дифференциальная УФ-спектроскопия в анализе производных барбитуровой кислоты.
5. Карбаматные пестициды: особенности анализа, конкретные примеры.

ТЕСТОВЫЙ КОНТРОЛЬ
2.01. К экстрагентам, применяемым на II этапе изолирования, предъявляются следующие требования:
1) высокая селективность
2) удельный вес больше удельного веса воды
3) низкая температура кипения
4) способность диффундировать в клетки ткани
5) отсутствие необратимых реакций между растворителем и растворенным веществом
2.02. При выборе условий экстракции (I этап, направленный анализ) следует учитывать:
1) рКа токсического вещества
2) липофильность токсического вещества
3) растворимость в водной и органических фазах
4) спектральные характеристики токсического вещества
5) степень связывания токсического вещества с белками
2.03. В качестве основных предварительных методов обнаружения токсических веществ, выделенных из тканей и органов, используют:
1) К спектроскопию
2) иммунохимические
3) хромогенные реакции
4) УФ спектроскопию
5) хроматографические (ТСХ)
2.04. В качестве подтверждающих методов при обнаружении токсических веществ используют:
1) ГЖХ
2) ВЭЖХ
3) ГХ/МС
4) иммунохимические
5) УФ спектроскопию
2.05. К экстрагентам, применяемым на 1 этапе изолирования токсических веществ (твердо-жидкостная экстракция), предъявляют следующие требования:
1) низкая температура кипения
2) способность диффундировать в клетки ткани
3) селективность
4) несмешиваемость с водой
5) высокая растворяющая способность
2.06. На эффективность экстрагирования из внутренних органов трупа оказывают влияние следующие качественные факторы:
1) соотношение количества экстрагента и массы навески
2) рН среды
3) природа биообъекта
4) природа анализируемого вещества
5) время экстракции
2.07. На эффективность экстрагирования из внутренних органов трупа оказывают влияние следующие количественные факторы:
1) природа анализируемого вещества
2) рН среды
3) навеска органа
4) природа соединения, добавленного для создания рН среды
5) время экстракции
2.08. Из кислой среды экстрагируются органическим растворителем
1) морфин, аминазин
2) хинин, дионин
3) фенобарбитал, амидопирин, кофеин
4) нитразепам, диазепам
5) новокаин, скополамин
2.09. Какие способы очистки могут быть использованы после изолирования лекарственных веществ из трупного материала
1) осаждение белков спиртом
2) возгонка
3) тонкослойная хроматография
4) центрифугирование
5) реэкстракция
2.10. Какие способы очистки используют при изолировании лекарственных веществ на 1 этапе
1) тонкослойная хроматография
2) осаждение белков спиртом
3) осаждение белков электролитами
4) гель-хроматография
5) центрифугирование
2.11. При отравлении лекарственные вещества всасываются из желудочно-кишечного тракта в виде:
1) продуктов биотрансформации
2) диссоциированных молекул
3) комплексов с белками
4) недиссоциированных молекул
5) конъюгатов
2.12. Лекарственные вещества, поступившие в кровь из ЖКТ, связываются с:
1) мочевиной
2) углеводами
3) микроэлементами
4) белками
5) витаминами
2.13. Выберите факторы, влияющие на метаболизм и токсикокинетику лекарственных веществ:
1) индукция и ингибирование метаболизма
2) топологические состояния
3) генетический
4) возрастные особенности
5) длительность применения лекарственных средств
2.14. Выбор “мочи” в качестве объекта ХТА на эфедрин и его метаболиты обусловлен:
1) отсутствием данных о смертельных отравлениях эфедрином
2) выведением до 70% поступающего эфедрина почками
3) тем, что моча является одним из наиболее доступных объектов при определении наркотического опьянения у живых лиц
4) ем, что “моча” входит в круг обязательных объектов при ХТА секционного материала
5) моча является наиболее «информативным» объектом при определении наркотического опьянения у живых лиц.
2.15. Преимущества метода сорбции перед жидкость-жидкостной экстракцией следующие:
1) специфика интерпретации получаемых данных
2) извлечения менее загрязнены и более концентрированы
3) высокая эффективность
4) высокая экспрессность и простота анализа
5) высокая воспроизводимость получаемых результатов количественного определения
2.16. К реакциям 1-ой фазы метаболизма относятся:
1) конъюгирование
2) смешанные реакции
3) немикросомальное окисление
4) окисление, катализируемое микросомальными ферментами печени
5) ацилирование
2.17. Какой метод обнаружения барбитуратов дает наименьший процент ложноположительных результатов
1) РИА
2) ИФА
3) ультрафиолетовая спектрофотометрия
4) ТСХ
5) ГЖХ
2.18. Выведение метаболитов каннабиноидов происходит главным образом с:
1) секретом молочных желез
2) мочой
3) калом
4) через кожу
5) секретом слюнных желез
2.19. Обнаружение каннабиноидов на хроматограмме происходит путем опрыскивания хроматограммы:
1) р-ром прочного синего Б в 10% р-ре HCI
2) р-ром AgNO3
3) водным раствором KMnO4
4) р-ром прочного синего ББ в 10% р-ре Na2CO3
5) р-ром FeCI3
2.20.. Производные 1,4-бензодиазепина являются:
1) амфолитами
2) слабыми кислотами
3) сильными кислотами
4) слабыми основаниями
5) сильными основаниями
2.41. Методы количественного определения производных фенотиазина:
1) ИК-спектроскопия
2) титриметрия
3) УФ спектрофотометрия
4) фотоколориметрия
5) визуальная колориметрия
2.42. Способ проявления нативных 1,4-БДА на хроматограмме:
1) ?-нафтолом
2) по собственной желтой окраске
3) ФПН-реактивом
4) реактивом Драгендорфа
5) N-?-нафтилэтилендиамином
2.43. Объекты для исследования на группу производных бензодиазепина
1) желудок с содержимым
2) печень
3) почки
4) выдыхаемый воздух
5) промывные воды желудка
2.44. Способ выделения производных бензодиазепина
1) прямая экстракция в органический растворитель
2) настаивание с подкисленной водой
3) настаивание с подкисленным спиртом
4) настаивание с подщелоченной водой
5) деструкция
2.45. Проявление хроматограммы на бензодиазепины проводят
1) по собственной желтой окраске
2) реактивом Братона-Маршала
3) по флюоресценции после хлорной кислоты
4) хлоридом железа
5) реактивом Драгендорфа
2.46. Какие вещества относятся к производным амфетамина:
1) МДА (3,4 метилендиоксиамфетамин)
2) эфедрон
3) метамфетамин (первитин)
4) метаквалон
5) МДМА (3,4 метилендиоксиметамфетамин), (Экстази)
2.47. Реакции обнаружения гептахлора:
1) Шенемана
2) Витали-Морена
3) с диэтиламином
4) с анилином и пиридином
5) Браттона-Маршала
2.48. Реактив для проявления пластинки “Silufol” при обнаружении хлорофоса:
1) бромтимоловый синий
2) аммиакат серебра
3) сульфаниловая кислота
4) резорцин с карбонатом натрия
5) Драгендорфа
2.49. Ядохимикаты, определение которых проводят по реакции образования молибденовой сини
1) гептахлор
2) ГХЦГ
3) карбофос
4) метафос
5) севин
2.50. Найдите ошибку:
Необходимые компоненты для проведения холинэстеразной пробы
1) ацетилхолинэстераза
2) ацетилхолин
3) бромтимоловый синий
4) уксусная кислота
5) агар
2.51. Ингибиторами холинэстеразы “in vivo” и “in vitro” являются:
1) Гептахлор
2) Карбофос
3) Метафос
4) ДДТ
5) Севин
2.52. Возможные способы изолирования дихлофоса (ДДВФ) из органов трупа:
1) Экстракция органическими растворителями
2) Перегонка с водяным паром
3) Изолирование подкисленным спиртом
4) Минерализация
5) Изолирование подкисленной водой
2.53. Скрининговые тесты для анализа пестицидов группы ФОС:
1) Определение активности холинэстеразы в крови или тканях органов трупа
2) Биохимическая реакция ингибирования холинэстеразы экстрактами из биологического материала
3) Анализ методом ТСХ
4) Анализ методом ВЭЖХ
5) Анализ методом ГЖХ
2.54. Пестициды, количественное определение которых производят после минерализации по образованию молибденовой сини:
1) Гексахлоран
2) Гептахлор
3) Метафос
4) Карбофос
5) Севин
2.55. Требуют специальной пробоподготовки (очистки экстрактов от соэкстрактивных веществ) при анализе органов трупа на наличие ФОС методы:
1) ТСХ
2) ВЭЖХ
3) ГЖХ
4) Хроматомасс-спектрометрический
5) Спектрофотометрический
2.56. Какие общие физико-химические методы и химические реакции используют для предварительного анализа извлечений из биологических объектов на хлорорганические пестициды:
1) обнаружение продуктов минерализации с молибдатом аммония
2) обнаружение продуктов минерализации с магнезиальной смесью
3) тонкослойная хроматография (ТСХ) реагент для обнаружения — аммиачный раствор нитрата серебра в ацетоне и УФ-лучи
4) отщепление всех атомов хлора, образующийся хлор вытесняет иод из раствора иодида кадмия и окрашивает крахмал в синий цвет
5) тонкослойная хроматография, реагент для обнаружения — сульфаниловая кислота и УФ-лучи
2.57. Какие физико-химические методы и химические реакции используют для предварительного анализа извлечений на фосфорорганические пестициды:
1) обнаружение продуктов минерализации с молибдатом аммония и магнезиальной смесью
2) тонкослойная хроматография, реагент для обнаружения — о-толидин и пероксид водорода
3) сплавление с металлическим натрием и обнаружение сульфидов
4) холинэстеразная проба
5) обнаружение продуктов гидролиза с хлоридом железа (III)
2.58. Подозревается отравление гексахлорциклогексаном. Какие физико-химические методы и химические реакции используют для доказательства гексахлорциклогексана:
1) ГЖХ
2) взаимодействие с металлическим натрием в присутствии спирта и обнаружение образовавшихся продуктов- с нитратом серебра и по реакции Витали-Морена
3) тонкослойная хроматография: проявитель – аммиачный раствор нитрата серебра и УФ-лучи
4) минерализация серной и азотной кислотами и обнаружение образовавшихся продуктов
5) кипячение в спиртовом растворе гидроксида натрия и обнаружение продуктов реакции с нитратом серебра
2.59. Какими методами проводят количественное определение фосфорорганических пестицидов:
1) аргентометрия после отщепления органически связанного хлора
2) кокплексонометрия
3) газожидкостная хроматография
4) фотометрия по образованию молибденовой сини после гидролиза пестицида
5) тонкослойная хроматография
2.60. Какими методами проводят количественное определение хлорорганических пестицидов:
1) хроматоферментативный метод
2) аргентометрия после отщепления органически связанного хлора
3) фотометрия по продуктам нитрования бензола после отщепления всех атомов хлора
5) газожидкостная хроматография
4) комплексонометрия

Стоимость данной учебной работы: 585 руб.